К.м.н. Паньков
А.С.
Оренбургская
государственная медицинская академия, Россия
Модификация
факторов патогенности в вирусо-бактериальной
ассоциации.
Взаимодействие вирусов и бактерий на
сегодняшний день до конца не изучено [1,
5].
Одним из актуальных вопросов инфекционной
патологии является определение роли вирусо-бактериальных ассоциаций в
патогенезе смешанных инфекций, в развитии бактериальных осложнений [6].
Известно, что взаимодействие между
бактерией и вирусом может проявляться через модификацию факторов патогенности.
Одним из основных факторов патогенности стафилококка является гемолитическая
активность [4], а фактором
персистенции антилизоцимная активность [3].
Известно взаимное влияние именно вируса
гриппа и S. аureus, что приводит к повышению риска, инфекций вызванных стафилококками
[10]. Это связано с тем, что вирус
гриппа
повышает специфическую адгезию S.aureus к эпителию дыхательных путей, а протеазы стафилококка
могут усиливать репликацию вируса гриппа [11]. Этот механизм может способствовать синергидному взаимодействию
вирусов
и
стафилококков и быть
причиной более тяжелого течения сочетанной инфекции. Штаммы вируса
гриппа снижают фагоцитарный киллинг S.aureus, приводя к повышенной агрессии патогена [9].
Цель исследования – изучить изменения
свойств вируса гриппа и S. au-reus в условиях сокультивирования.
Материалы и методы
Было изучено 40 штаммов S. aureus, выделенных
со слизистой оболочки носа и слизистой оболочки миндалин больных гриппом людей.
Выделение и идентификацию S. aureus проводили по общепринятым схемам, используя
тест-системы фирмы «Lachema» (Чехия) [7]. У выделенных микроорганизмов S. aureus были
определены гемолитическая (ГА) [2], лизоцимная
(ЛА) и антилизоцимная (АЛА) активности чашечным методом [3].
Забор материала на вирусологическое исследование
производился со слизистой оболочки носа больных гриппом людей. Выделение и
идентификацию вируса гриппа проводили согласно методическим рекомендациям [7]. Выделение вирусов производилось на клеточной
культуре MDCK. От обследованных больных в период экспериментального исследования (III-2010 – VI-2010) было выделено 3 штамма вируса гриппа В. Вирус гриппа А в данный
период не выделялся.
Для изучения
модификации свойств вируса гриппа и S. aureus в условиях
сокультивирования использована экспериментальная модель вирусо-бактериальной
ассоциации в культуре клеток (заявка на патент № 2011117801).
Для количественного определения
концентрации вируса гриппа в эксперименте был использован метод ПЦР в режиме
реального времени аппаратом Rotor Gene 6000.
Статистическую обработку результатов
проводили с использованием программы «Biostat»,
«Statistica 6,0», «SPSS 11.0».
Результаты и обсуждение
После соинкубирования S. aureus и
вируса гриппа у золотистого стафилококка были изучены интенсивность роста, а
также экспрессия факторов патогенности и персистенции: ГА, ЛА, АЛА.
Интенсивность роста оценивался на чашках
Петри по числу выросших колоний стафилококков: в опыте - после ассоциации с
вирусом гриппа, в контроле – без ассоциации с вирусом гриппа.
При оценке абсолютных показателей роста S. aureus, в
присутствии вируса гриппа и без вируса гриппа, обращает на себя внимание следующий
факт, что число выросших колоний S. aureus на чашке Петри после соинкубирования с вирусом гриппа
в 3 раз больше, чем число колоний S. aureus без соинкубирования с вирусом гриппа (Nсредн.=
411±6,1 колоний против Nсредн.= 126±4,5 колоний, p<0,05).
Распространенность гемолитической
активности S. aureus в опыте в 2,7 раза была больше, чем в контроле
(55,0±12,8 % против 20,0±10,3 %, при p<0,05),
а уровень экспрессии в 2,7 раза выше (1,9±0,4 мм против 0,7±0,3 мм, при p<0,03).
Экспрессия лизоцимной активности S. aureus в опыте была
в 3,6 раза выше, чем в контроле (1,8±0,3 мм против 0,5±0,2 мм, p<0,05), а распространенность ЛА в 5 раз выше у
штаммов S. aureus, после
соинкубирования с вирусом гриппа (45,0±8,6 % против 8,3±3,9%, p<0,05).
Антилизоцимный признак у S. aureus в опыте
имел высокую экспрессию признака (в 4,4 раза больше) по сравнению с контролем
(3,5±0,4 мкг/мл против 0,8±0,4 мкг/мл, при p<0,01), распространенность АЛА была в 3,3 раза
больше (73,3±11,4 % против 22,2±12,5 %, при p<0,01).
У вируса гриппа после соинкубирования с S. aureus были
определены способность агглютинировать эритроциты и цитопатическое действие, а
также количественное определение концентрации вируса путем подсчета циклов
амплификации методом ПЦР в режиме
реального времени.
Вирус гриппа
агглютинировал эритроциты в разведениях от 10-1 до 10-2.
В опыте в присутствии S. aureus вирус
гриппа агглютинировал эритроциты в большем разведении - до 10-4.
Полное разрушение культуры клеток под
действием вируса в монокультуре происходило на 6 день инкубирования. В опыте в
присутствии S. aureus цитопатическое действие вируса полностью происходило
на 2 дня раньше.
Для количественного определения
концентрации вируса гриппа в эксперименте был использован метод ПЦР в режиме
реального времени аппаратом Rotor Gene 6000.
Результаты представлены.
Как видно из
рисунка 3 вирус гриппа после соинкубирования с S. aureus регистрировался на 15-17
циклах амплификации, а в контроле (без инкубации с S. aureus) только с 21 цикла, что
свидетельствовало о более быстром накоплении вируса гриппа под влиянием S. aureus.
Приведенные данные показали, что в
клеточной культуре вирус гриппа стимулирует рост S. aureus и
усиливает его факторы патогенности. При отсутствии вируса гриппа в культуре
клеток рост S. aureus заметно ниже, факторы патогенности проявляются
слабее.
У вируса гриппа вследствие взаимодействия с
S. aureus
усиливается способность агглютинировать
эритроциты в 2 раза, а также усиливается цитопатическое действие, которое
проявляется сокращением жизнеспособности культуры клеток на 2 дня, кроме того
концентрация вируса гриппа также увеличивается.
Данные результаты показывают взаимное
влияние вируса гриппа и S. aureus, что в
итоге сказывается на клеточной культуре в виде усиления цитолиза. Можно
предположить, что, потенцируя действие друг друга, вирус гриппа и S. aureus отягощают
течение гриппозной инфекции и развитие бактериальных осложнений.
Изучение
закономерностей формирования вирусо-бактериальной ассоциации поможет
расшифровке новых звеньев в механизме симбиотических взаимоотношений. Включение
в симбиоз вирусов и бактерий может иметь разные последствия для гомеостаза
хозяина, определять результат течения инфекционного процесса.
Литература.
1.
Беляева Е.В., Борискина Е.В., Ермолина Г.Б. и др. Исследование персистентных свойств микрофлоры
респираторного тракта больных хроническими неспецифическими заболеваниями
нижних дыхательных путей // Медицинский альманах. – 2010. - № 2. - С.
266-269.
2. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и
вирусологическим методам исследования. – М.:
Медицина, 1982. - 462с.
3.
Бухарин О. В.
Антилизоцимный признак бактерий и перспективы его практического использования
// Персистенция микроорганизмов / Под ред. О. В. Бухарина. Куйбышев, 1987. - С.
4—10.
4. Бухарин О.В.,
Усвяцов Б.Я., Чернова О.Л.
Биология
патогенных кокков. - Екатеринбург: УрО РАН. - 2002. -282 с.
5.
Гудима И.А. Микробные
биоценозы при гипертрофии лимфоидного кольца глотки и хроническом тонзиллите у
детей. Автореф. дис. канд. Ростов-на-Дону, 2002.
6.
Колобухина Л.В. Клиника
и лечение гриппа. // Русский медицинский журнал.– 2001. - № 9. – С. 16 - 17.
7.
Методические рекомендациями по выделению и идентификации бактерий рода Staphylococcus. - Москва, 1990.
8.
Методические
рекомендации «Выделение вируса гриппа в клеточных культурах и куриных эмбрионах
и их идентификация». – СПб., 2006.
9. Abramson J.S., Lewis
J.C., Lyles D.S. et al. Inhibition of neutrophil lysosome-phagosome fusion
associated with influenza virus infection in vitro. Role in depressed
bactericidal activity // J. Clin. Invest. – 1982. – Vol. 69. – P. 1393–1397.
10. Nickerson C.L., Jakab G.J.
Pulmonary antibacterial defenses during mild and severe influenza virus
infection // Infect. Immun. – 1990. – Vol. 58. – P. 2809–2814.
11. Sanford B.A.,
Ramsay M.A. Bacterial adherence to the upper respiratory tract of ferrets
infected with influenza Avirus // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. – 1987. – Vol.
185. – P. 120–128.