Ветеринария /1
д.в.н. Анников В.В.1,
к.т.н. Родионов И.В.2,
асп. Краснова Е.С.1, к.в.н. Анникова Л.В.1
1Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И.
Вавилова
2Саратовский государственный технический университет
Статья подготовлена при
поддержке гранта Президента РФ
МК-1799.2011.8.
Медико-биологическое исследование изменения морфологического состава
крови и костного мозга при имплантации стержневых остеофиксаторов с лантаносодержащими
воздушно-термическими оксидными покрытиями
При лечении костной травмы у мелких
непродуктивных животных хорошо изучены вопросы, касающиеся различных способов и
методов репозиции костных фрагментов [1]. Однако, согласно современным
представлениям, такая репозиция приводит к развитию травматической болезни,
которая представляет совокупность общих и местных патологических, а также
приспособительных реакций организма животного [2]. В результате
угнетения защитных и приспособительных механизмов развивается определенная
иммунодепрессия, а для определения состояния адаптационных резервов организма
является достаточно информативным исследование морфологического состава крови и
костного мозга.
При репозиции костных
фрагментов с использованием аппаратов внешней чрескостной фиксации нами
применялись стержневые остеофиксаторы с биосовместимым воздушно-термическим
оксидным покрытием, модифицированным лантаном, обладающим бактерицидными и
тромборезистентными свойствами [3]. Однако в известных научно-технических
литературных источниках отсутствуют данные о влиянии остеофиксаторов с
термооксидным покрытием, обогащенным лантаном, на показатели периферической
крови и красный костный мозг.
Поэтому целью работы было определение влияния термооксидированных остеофиксаторов, обогащенных лантаном, на состояние костного мозга и динамику гематологических показателей животных с переломами костей конечностей.
Объектом исследований являлись кролики породы
«серый великан», которые были отобраны в две экспериментальные группы по
принципу аналогов по 3 головы в каждой. Для проведения клинического опыта были
смоделированы флексионные переломы бедренных костей и установлены аппараты внешней
стержневой фиксации [1]. Первой (контрольной) группе
установили остеофиксаторы из медицинской биотолерантной нержавеющей стали
12Х18Н9Т (ГОСТ 5632-72). Второй (опытной) группе - стальные остеофиксаторы с воздушно-термическим покрытием,
содержащем микрочастицы лантана. При этом формирование оксидного покрытия
осуществляли в процессе оксидирования фиксаторов на воздухе в лабораторной
электропечи сопротивления при температуре 5000С и продолжительности
0,5 ч. После термообработки в поверхность остеофиксаторов внедряли лантан по
методу катодного внедрения [4].
После операции кроликам обеих групп проводили
превентивную антибиотикотерапию, зону контакта остеофиксаторов с кожей
санировали 3%-м раствором перекиси водорода.
Животных выводили из эксперимента на тридцатые
сутки, вскрывали костномозговой канал бедренной кости и готовили мазки, которые
окрашивали гематоксилином и эозином, после чего их микроскопировали при увеличении
в 1350 крат.
При экспериментальном анализе использовались
клинический, гематологический, цитологический и статистический методы
исследования. Статистическое исследование проводили с применением
специализированной программы Statistika 6.
При клинической оценке
состояния животных в первые дни эксперимента не было выявлено существенных
отличий в обеих опытных группах кроликов. Однако уже через сутки после операции
при локальном обследовании травмированных конечностей всех кроликов отмечалась
выраженная картина воспаления в месте контакта кожи с остеофиксатором,
отчетливо просматривались отечность и гиперемия мягких тканей, их болезненность
при пальпации. Но к седьмым суткам после операции у животных обеих групп не
наблюдались симптомы воспаления мягких тканей, пальпация мягких тканей в зоне дефекта
не вызывала беспокойства животных.
Одновременно с клиническим
методом проводили мониторинг гематологических показателей до операции, а также
на 3-и , 14-е и на 30-е сутки эксперимента. После статистической обработки были
получены следующие данные: к 14-м суткам эксперимента прослеживалась
положительная динамика в обеих группах животных. В частности, восстановилось
количество эритроцитов (4,0±0,1×1012/л в опытной группе и 4,3±0,1×1012/л в контрольной группе). Уровень гематокрита находился на нижней границе
физиологической нормы (36,1±0,3% в обеих группах). Уровень
гемоглобина увеличился в опытной группе 92,1±1,8г/л,
против 90,0±2,1г/л в контрольной группе. Количество лейкоцитов незначительно
колебалось в пределах физиологической нормы (8,9±0,8×109/л в опытной и
8,5±1,0×109/л в контрольной группах). Отмечался моноцитоз в обеих группах животных на
протяжении 30-и суток (5,3±0,3% 4,0±0,4%), что свидетельствует о наличии
воспалительных явлениях в тканях [5].
Все остальные гематологические показатели вернулись к исходным данным на 30-е
сутки эксперимента.
Следующим этапом работы
было цитологическое исследование мазков костного мозга (табл.). Согласно этим
данным, к 30-м суткам эксперимента отмечалось сужение белого ростка. В первой
группе на уровне сегментоядерных нейтрофилов 19,7 ±8,1%, во второй группе –
17,3±7,1%; лимфоцитов 13,3±5,5% и 14,7±6,0% соответственно. Кроме того, было
отмечено сужение красного ростка на уровне полихроматофильных нормоцитов
(20,3±1,4% в первой и 15,7±6,5% во второй группах), что говорит об угнетении
гемопоэза.
Необходимо отметить, что
лейко-эритроцитарный индекс (ИЛЭ) в первой группе животных составил 1,3, а во
второй 1,4. Таким образом, эти явления свидетельствуют о сохраняющихся
воспалительных явлениях и на 30-е сутки эксперимента. Причем и во второй группе
опытных животных эти явления оказались ярче выражены.
Средние показатели костного мозга кроликов (n=3, M±m)
Показатели |
Первая (контрольная)
группа |
Вторая (опытная) группа |
|
Миелобласты,% |
2,1±0,6 |
2,7±0,3 |
|
Миелоциты,% |
8,7±1,3 |
8,3±0,3 |
|
Метамиелоциты,% |
12,7±0,7 |
12,7±1,5 |
|
Палочкоядерные
нейтрофилы,% |
10,7±0,9 |
9,3±0,3 |
|
Сегментоядерные
нейтрофилы,% |
19,7±8,1 |
17,3±7,1 |
|
Эозинофилы, % |
1,7±0,8 |
1,0±0,7 |
|
Моноциты, % |
3,0±1,4 |
2,3±1,0 |
|
Лимфоциты, % |
13,3±5,5 |
14,7±6,0 |
|
Эритробласты, % |
1,0±0,4 |
1,0±0,7 |
|
Нормоциты |
Базофильные, % |
3,3±1,4 |
3,0±1,4 |
Полихроматофильные,
% |
20,3±1,4 |
15,7±6,5 |
|
Оксифильные, % |
2,7±1,3 |
3,7±1,5 |
|
Индекс лейко/эритро
(ИЛЭ) |
1,3 |
1,4 |
На основе вышеизложенных
данных можно сделать вывод, что чрескостные остеофиксаторы с
воздушно-термическими оксидными покрытиями, модифицированными лантаном, не оказывают
токсического влияния на органы лимфоидной системы и не препятствуют ранней
нормализации клинических показателей.
1.
Анников, В.В. Анатомо - хирургические аспекты оптимизации репаративного
остеогенеза в условиях внешней фиксации аппаратами стержневого типа. Дисс. д-ра
ветер. Наук. - С., 2006.-365 с.
2. Ватников, Ю.А.
Особенности посттравматической регенерации костной ткани под влиянием
тирокальцитонина / Ю.А. Ватников, Н.В.Краснова//Междунар. ветеринар.
конгр.,11-й: Матер.- М.,2002.-с.29-30.
3. Патент РФ на изобретение №2386454. Биопокрытие на имплантат
из титана и его сплавов и способ его получения / Родионов И.В., Серянов Ю.В.,
Бутовский К.Г., Гоц И.Ю., Попова С.С. Опубл. 20.04.2010.
4. Родионов И.В., Попова С.С. Имплантаты с оксидными биосовместимыми
покрытиями, катодно-модифицированными лантаном / Материалы Всерос. науч.-практ.
конф. молодых ученых «Инновации и актуальные проблемы техники и технологий».
Саратов: Сарат. гос. техн. ун-т, 2009. Т.2. С. 287-290.
5. Винников Р.Г.
Ветеринарная лабораторная диагностика. Саратов: изд-во БИК СГАУ, 2003. – 360 с.