Моцний М.П., Сластьонов В.М., Моісеєнко К.В.
Дніпропетровський національний університет імені Олеся
Гончара
У вищих рослин встановлені та вивчаються
різні види електричної активності [1]. Існують різноманітні способи стимуляції
біопотенціалів рослин, проте найбільш цікавою є фотостимуляція [2], оскільки
світло – це один з найважливіших екологічних показників у житті рослин, а зміна
інтенсивності видимого світла, безумовно, – адекватний подразник для
фотосинтезуючих зелених рослин. Проте потенціали дії (ПД) при світловому подразненні
виникають далеко не завжди, тому що світло неоднорідне за спектральним складом
ї різною мірою поглинається навіть однією і тією ж речовиною.
З погляду дослідників, у вищих рослин існують
альтернативні механізми і системи збудження реакцій, викликаних світлом і
несвітловими подразниками [1,3,4].
Біоелектричні реакції у відповідь на світлові подразники принципово
відрізняються від ПД. Події, що відбуваються у плазматичній мембрані клітин при
їх освітленні світловими імпульсами, можна представити таким чином. Первинна
інактивація Н+-АТФази приводить до падіння мембранного потенціалу до
порогового рівня, потім відкриваються потенціалзалежні Са2+-канали,
вхід іонів кальцію в клітку актівує Cl–-канали, за участю яких
генерується фаза деполяризації світлоіндукованої біоелектричної реакції. У
генерації фази реполяризації беруть участь іони К+. Таким чином,
світло є дуже ефективним подразником, хоча первинна світлоіндукована реакція
має характер типової місцевої градуальної відповіді, й лише після досягнення
порогового рівня потенціалу відбувається генерація ПД .
У даній роботі досліджувався вплив
фотостимуляції на біопотенціали листя кукурудзи. В експериментах застосовували
спеціальний фотостимулятор з набором фотодіодів, які випромінювали світло
різних частотних діапазонів: червоне (довжина хвилі λ = 620-760 нм),
зелене (λ = 500-565 нм), сине (λ = 440-485 нм). Для запобігання
термічному нагріву листа використовували інфрачервоні фільтри. Освітленість,
створену діодами, регулювали силою струму в них та реєстрували каліброваним
фотометром. Відвідні електроди, що не поляризуються, розміщували на листі:
активний – безпосередньо на ділянці світлової плями від фотостимулятора,
пасивний – на індиферентній частині листа. Перед початком вимірювань всі
рослини тримали у темряві протягом 20 хвилин .
Результати серії дослідів із
стимуляцією листа червоним світлом наведені на рис.1.
Рис.1 Осцилограма потенціалу листа, викликаного
фотостимулом
(червоне світло, довжина
хвилі 620–760 нм, освітленість 70 лк)
У процесі досліду здійснені три послідовні
реєстрації біопотенціалів (1–3), кожна з яких тривала 1300 с. Видно, що
амплітуда деполяризації значно зменшувалась з плином часу: для першої
реєстрації амплітуда становила 25 мВ, для другої – вже 12,5 мВ, для третьої –
лише 2,5 мВ. Тривалість потенціалу також помітно зменшувалась від першої до
останньої реєстрації.
Глибина фази гіперполяризації, яка слідує за
деполяризацією, навпаки, з часом зростала: для першої реєстрації амплітуда була
8 мВ, для другої – 15 мВ, для третьої – 20 мВ. Тривалість потенціалу
гіперполяризації визначалась часом освітлювання. Після вимкнення світла
спостерігалось різке коливання потен-ціалу: швидка фаза гіперполяризації, за
нею фаза відносно повільної деполяризації, а потім – фаза відновлення.
Для світла двох інших довжин хвиль
спостерігалась подібна динаміка потенціалу. Найбільші амплітуди фаз
деполяризації і гіперполяризації зареєстро-вані для зеленого світла, найменші –
для синього, що добре узгоджується з літературними даними.
Деполяризація клітин, що викликається
імпульсом світла, – це, скоріш за все, сумарний потенціал дії, пов’язаний з
дією фотостимулів на мембрани клітин і з сумарним потоком Н+
всередину клітин, який може бути обумовленим рядом чинників: зростанням
швидкості пасивного надходження Н+ в цитоплазму, уповільненням
активного транспорту з цитоплазми або споживанням СО2 в темнових
реакціях фотосинтезу. Разом з тим одержані результати не виключають можливості
того, що поглинання світла хлоропластами приводить до активації локалізованих в
плазмалемі іонних каналів, проникних для протонів, і викликає, як наслідок,
зміну місцевих потенціалів і рН у поверхні клітини.
Литература
1. Биоэлектрогенез у высших растений /
В.А.Опритов и др.– М.: Наука, 1991. – 216 с.
2. Вплив фотостимуляції на біоелектичну реакцію
листя кукурудзи / М.П.Моц-ний та ін. // Вісник Дніпропетровського університету.
Біологія. Екологія. – 2011. – Вип.19, т.2. – С. 103-108.
3. Temperature sensing by plants:the primary characteristics of signal perception and calcium response / Plieth C. et al. // Plant J. – 1999. – V.18. – P.491–497.
4. Сопряжение генерации потенциала действия в
клетках растений с метаболизмом: современное состояние проблемы / С.С.Пятыгин и
др. // Успехи соврем. биол. – 2005. – Т. 125. – С. 534–542.