Біологічні
науки / 8.Фізіологія людини і тварин
Григорова Н.В., Єщенко Ю.В.
Запорізький національний університет
Вплив фізичного навантаження та іммобілізації
на вміст цинку в клітинах адреналектомованих щурів
Фізичне навантаження та
іммобілізація викликають підвищення вмісту цинку в клітинах, що пояснюється
активацією інкреторної функції наднирників [1]. Для підтвердження такого
положення нами були проведені дослідження у адреналектомованих щурів (АЕЩ).
У дослідах було використано 52 щура, серед яких були контрольні
(інтактні) тварини, а також адреналектомовані щурі з одноразовим фізичним навантаженням
(ОФН) і одноразової іммобілізацією (ОІ). Для ОФН щурів поміщали в ванну з
температурою води 32 ºС, де вони плавали впродовж 2 год. ОІ викликали прив’язуванням тварин на 8 год за
допомогою м’яких пов’язок до станку в положенні
спиною донизу.
Перед забоєм у щурів брали кров з хвоста та готували мазки.
Забивали тварин декапітацією. Із головного мозку готували заморожені зрізи 30
мкм завтовшки. Шматочки підшлункової залози, тонкої кишки, передміхурової залози
фіксували протягом 12 год у холодному (4 ºС) ацетоні. Потім шматочки витримували в двох
ксилолах (впродовож 15 хв у кожному), суміші ксилолу та парафіну (30 хв при 40
º С), двох
рідких парафінах (по 1,5 год у кожному при 56 º С) та заливали в парафін. Зрізи
готували 5 – 10 мкм завтовшки, депарафінували обробкою в двох
ксилолах (по 3 хв у кожному), двох спиртах (по 3 хв), забарвлювали протягом 1
хв 0,01% ацетоновим розчином 8–(п-толуолсульфоніламіно) – хіноліну (8–ТСХ),
промивали протягом 5 хв у дистильованій воді, замикали в гліцерин і
мікроскопіювали.
Таким же чином забарвлювали зрізи головного мозку. Зрізи
органів розглядали під люмінесцентним мікроскопом. Для збудження
люмінесценції використовували світлофільтр ФС–1, як окулярний застосовували
світлофільтр зі скла ЖС-18. На препаратах цинк визначали по жовто-зеленій люмінесценції.
Мазки фіксували впродовж 5 хв у парах формаліну та
забарвлювали протягом 3 год 0,2 % водно-аміачним розчином дитизону. На
препаратах у цитоплазмі зернистих лейкоцитів виявляли червоні гранули.
Інтенсивність
дитизонової та 8-ТСХ реакцій оцінювали за трибальною системою, запропонованою В.В.Соколовським
[2] і Ф.Хейхоу і Д.Квагліно [3]. Підрахували середню арифметичну величину (), похибку (m) та показник
вірогідності (р) [4].
Позитивна реакція 8-ТСХ у
головному мозку визначалась в зубчастій фасції, полях СА 2 –СА 4 гіпокампа, у
підшлунковій залозі – в панкреатичних клітинах, у тонкій кишці – в клітинах
базальних відділів крипт (клітинах Панета), у передміхуровій залозі – в
клітинах кінцевих відділів.
У контрольних (інтактних) тварин
цинку виявлялось: у гіпокампі - 1,9 ± 0,16 ум.од., В-інсулоцитах – 0,5 ± 0,03 ум.од.,
гранулоцитах крові – 1,2 ± 0,08 ум.од., клітинах Панета – 2,1 ± 0,15 ум.од., в
простаті – 1,8 ± 0,15 ум.од. У АЕЩ спостерігалося зниження вмісту металу
відповідно на 42 % (р < 0,001), 40 % (р < 0,001), 50 % (р < 0,001), 38 % (р
< 0,001), 44 % (р < 0,001).
У випадках з ОФН у АЕЩ інтенсивність
цитохімічних реакцій була знижена на 21 % (р > 0,05) у гіпокампі, 20 % (р
< 0,05) – у В-інсулоцитах, 42 % (р
< 0,001) – у гранулоцитах крові, 33 % (р < 0,001) – у клітинах Панета, 39
% (р < 0,001) – у простаті. В
порівнянні з АЕЩ спостерігалося підвищення вмісту цинку на 36 % (р < 0,001)
у гіпокампі, 33 % (р < 0,05) – у клітинах В острівців, 17 % (р > 0,05) –
у гранулоцитах крові, 8 % (р > 0,05) – у клітинах Панета, 10 % (р > 0,05)
– у простаті.
У випадках з ОІ АЕЩ вміст
цинку був знижений у гіпокампі – на 16 % (р > 0,05), 40 % (р < 0,001) – у
В-клітинах, 42 % (р < 0,001) – у гранулоцитах крові, 38 % (р < 0,001) – у
клітинах Панета, 33 % (р < 0,001) – у простаті. В порівнянні з АЕЩ у АЕЩ з
ОІ вміст цинку був підвищений на 45 % (р < 0,001) у гіпокампі, 0 % (р >
0,05) – у В-інсулоцитах, 17 % (р > 0,05) – у гранулоцитах крові, 0 % (р >
0,05) – у клітинах Панета, 20 % (р > 0,05) – у простаті.
Отримані дані можуть бути
підтвердженням того, що регуляція вмісту цинку в клітинах гіпокампа неможлива
без участі надниркових залоз.
1. Берегова Т.В.,
Єщенко Ю.В. Зміни вмісту цинку в клітинах при різних функціональних станах
інсулярного апарата підшлункової залози // Вісник ЗДУ. – 2003. - №1. – С.11-15.
2. Соколовский
В.В. Гистохимические исследования в токсикологии.- Л.: Медицина, 1971. - 172c.
3. Хейхоу Ф., Кваглино Д.
Гематологическая цитохимия. - М.: Медицина, 1983. - 320с.
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. – М.:
Высшая школа, 1980. – 293с.