Медицина/ 6.Экспериментальная и клиническая фармакология
Гребнева О.Л., Ковинька М.А., Силантьева Т.А., Горбач Е.Н.
Федеральное государственное бюджетное учреждение
«Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им.
академика Г.А. Илизарова Минздравсоцразвития», Россия, г. Курган
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ
ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ДЕРИВАТОВ КРОВИ В СОСТАВЕ МАЗИ ДЛЯ ОПТИМИЗАЦИИ
РЕПАРАТИВНЫХ ОСТЕО-, КЕРАТО-
И ДЕРМОГЕНЕЗА
Ранее проведенные исследования
показали эффективность внутритканевого введения полипептидных компонентов сыворотки/плазмы
крови доноров с активным остеогенезом [1, 3]. Целью настоящего исследования
явилось изучение действия компонентов сыворотки крови с заданными
физико-химическими свойствами на репаративную регенерацию кости и кожи при их
аппликациях в составе средства для наружного применения.
Эксперименты были выполнены на 40 белых лабораторных мышах самцах
массой 22-27 г, которые были объединены в 4 экспериментальные группы, по 10
животных в каждой (таблица 1). Моделирование перелома ребра проводили по
разработанной методике через полнослойный разрез покровных и мышечных тканей длиной
6 мм [2]. Животным всех групп, за исключением группы «контроль 1», выполняли
накожные мазевые аппликации в области оперативного вмешательства один раз в
день со 2-х по 9-е сутки после операции.
Таблица 1
Распределение животных по
группам
Группа |
Воздействие |
Контроль 1 |
Операция по моделированию перелома ребра |
Контроль 2 |
Операция + (суспензия тизоля) |
Опыт 1 |
Операция + (суспензия тизоля + 0,6% фракция плазмы
крови) |
Опыт 2 |
Операция + (суспензия тизоля + 1,2% фракция плазмы
крови) |
Донорами
крови были 10 белых лабораторных мышей,
которым за трое суток до забора крови осуществляли закрытый перелом костей голени. Выделение фракции плазмы крови
включало процедуры солевой преципитации, гель-проникающей и ионообменной
хроматографии, а также лиофилизацию. В качестве мазевой основы средства для
наружных аппликаций использовали фармакопейный препарат «Тизоль», разрешенный к
медицинскому применению [4]. Через 10 суток эксперимента проводили эвтаназию
животных и выделяли фрагменты ребер и кожного покрова области выполнения
оперативного вмешательства. Проводили светооптические гистологические и
гистоморфометрические исследования, включающие подсчет количества клеток
хондробластической и остеобластической линий дифференцировки периостального
регенерата в поле стандартной площади. Сравнительную оценку состояния кожного
покрова проводили с использованием описательной световой микроскопии и
полуколичественным методом. Подсчитывали число рядов клеток в эпидермисе,
оценивали васкуляризацию, клеточность дермы кожного регенерата и наличие в нем
дериватов. Гистоструктурные изменения оценивали по шкале от сильно выраженных изменений вплоть до их отсутствия.
Статистическую обработку результатов проводили с использованием
непараметрического критерия Вилкоксона для независимых выборок с принятием
критического уровня значимости равным 0,05.
У всех животных в интермедиарной части зоны сращения перелома располагалась
рыхлая, реактивно измененная, волокнистая соединительная ткань, бесструктурные
массы детрита. На периостальной поверхности ребра формировалась объемная
костно-хрящевая мозоль. Новообразованная грубоволокнистая костная ткань
наблюдалась в виде тонкого слоя на поверхности компактной пластинки кости и в
составе перихондрально образованных костных трабекул. Применение только мазевой
основы «Тизоль» (группа «контроль 2»), а также фракции плазмы крови в большей
концентрации (группа «опыт 2»), не оказывают статистически значимого влияния на
численность клеток обоих типов (табл.2). В группе «опыт 1» отмечено значимое
увеличение процентного количества остеоцитов, что позволяет говорить о
выраженном остеоиндуцирующем эффекте в данной группе эксперимента.
Таблица 2
Количество
клеток костной (Остеоциты) и хрящевой (Хондроциты) тканей на единицу площади
периоста (0,0025 мм2)
Группа
|
Характеристика
|
Остеоциты |
Хондроциты |
Контроль 1 |
Медиана |
0,733 |
7,32 |
25 процентиль |
0,533 |
6,58 |
|
75 процентиль |
0,983 |
7,38 |
|
Контроль 2 |
Медиана |
0,633 |
6,1 |
25 процентиль |
0,617 |
5,7 |
|
75 процентиль |
0,683 |
7,67 |
|
Опыт 1 |
Медиана |
2,60* |
5,33 |
25 процентиль |
2,217 |
5,07 |
|
75 процентиль |
3,05 |
5,48 |
|
Опыт 2 |
Медиана |
0,317 |
6,25 |
25 процентиль |
0,3 |
6,15 |
|
75 процентиль |
0,417 |
7,6 |
* Достоверность различия результатов между группами:
выделение жирностью – от значений контроля 1 (р<0,02), чертой – от контроля
2 (р<0,05).
Данные анализа состояния кожных покровов свидетельствуют
о том, что к нормальному строению были наиболее приближены регенераты кожного покрова
животных опытных серий эксперимента, что было наиболее выраженным у животных серии
«опыт 2» (таблица 3).
Таблица 3
Полуколичественная
оценка гистоструктурных компонентов кожного покрова в области повреждения ребра
Серии эксперимента |
Число
рядов клеток в эпидермисе |
Клеточность в
дерме |
Наличие дериватов |
Васкуляризация |
Контроль
1 |
5-8 |
+++* |
― |
± |
Контроль
2 |
7-9 |
+++ |
― |
+ |
Опыт
1 |
4-6 |
++ |
± |
+ |
Опыт
2 |
3-5 |
+ |
++ |
+ |
Норма |
1-2 |
± |
+++ |
++ |
*Степени выраженности признака: (+++) – сильная, (++) – умеренная, (+)–
слабая, (±) – очень слабая. (―) – отсутствие признака.
По результатам
исследования можно сделать следующие выводы.
1. Мазевая
основа Тизоль не оказывает достоверного влияния на гистоморфологические показатели
животных-реципиентов.
2. 0,6%-ная
концентрация компонентов крови стимулирует периостальный остеогенез в области
перелома, не влияя на репаративную регенерацию компонентов кожи.
3. 1,2%-ная
концентрация компонентов крови ускоряет восстановление гистоструктуры кожного
покрова, не влияя на показатели регенерации тканей в области перелома.
Данные литературы позволяют предположить, что активность выделенной нами фракции плазмы крови обусловлена наличием в ней факторов роста и интерлейкинов, участвующих в обеспечении местных пролиферативных процессов. Общими стимуляторами для регенерации кости и кожи являются множество цитокинов: трансформирующие факторы роста (ТФР), фактор роста эндотелия сосудов, тромбоцитарные факторы роста, факторы роста фибробластов и другие [5 – 9]. Полученные результаты свидетельствуют о перспективности использования различных доз компонентов плазмы крови от доноров с активным остеогенезом в составе средства для наружного применения у групп пациентов с повреждением кости и кожных покровов.
Литература
1.
Гребнева, О.Л. Влияние
остеоиндуктивных компонентов плазмы крови на гематологические показатели у
мышей / О.Л. Гребнева, М.А. Ковинька, С.П. Изотова // Гений ортопедии. – 2005.
- № 3. – С. 58-61.
2.
Гребнева, О.Л.
Экспериментальная модель для изучения процессов репаративного остеогенеза / О.Л.
Гребнева, М.А. Ковинька, Т.А. Силантьева, О.В. Дюрягина, Л.И. Сбродова, Е.И.
Кузнецова, Л.В. Розова, М.В. Стогов, Е.А. Ткачук // Сибирский медицинский
журнал (Томск). – 2011. – № 1, вып.1. –
С. 135-139.
3.
Патент 2193868 Российская Федерация, МПК 7
А 61 В 17/56, А 61 Р 5/50. Способ
стимуляции репаративного остеогенеза / Десятниченко К.С., Ларионов А.А.,
Гребнева О.Л., Ерофеев С.А., Ковинька М.А., РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А. Илизарова
(РФ). - № 98105940/14; Заявл.
26.03.1998, Опубл. 10.12.2002, Бюл. № 34.
4. Смагина, Т.А. Перспективы использования в медицине
аквакомплекса глицеросольвата титана и препаратов на его основе / Т.А. Смагина,
Б.Н. Бекетов // Бюллетень сибирской медицины. - 2006. - Приложение 2. - С.
131-132.
5.
Щепеткин,
И.А. Полипептидные факторы остеогенеза / И.А. Щепеткин // Усп.совр.биол. -
1994. - Т.114, вып.4 - С.454-466.
6. Mohan, S. Bone growth factors / Mohan S., Baylink D.J. // Clin.Orthop.and
Rel.Res. - 1991. - No.263 (Febr.). - P.30-48.
7. Regeneration of
Class III furcation defects with basic fibroblast growth factor (b-FGF)
associated with GTR. A descriptive and histometric study in dogs / Rossa C.,
Marcantonio E., Cirelli J.A., Marcantonio R.A., Spolidorio L.C., Fogo J.C. //
J. Periodontol. – 2000. – Vol. 71, No 5. – P. 775-784.
8.
Singer, A.J. Cutaneous wound healing / Singer A.J., Clark R.A. // N. Engl. J. Med. – 1999. - N 341. – P.738-746.
9.
Skeletal defects in VEGF(120/120) mice revealmultiple roles for VEGF in
skeletogenesis / E. Zelzer, W. McLean, Y. S. Ng, N. Fukai, A. M. Reginato, S.
Lovejoy, P. A. D'Amore, B. R. Olsen //Development. – 2002. – V.
129, № 8. – P. 1893–1904.